Prácticas Ampliación de Biología  -11-

 GRUPO: KUANSA

COMPONENTES:

1. Ana Sánchez Sierra (moderadora)
2. Sandra Vaquero Portocarrero (controladora)
3. Andrea Hernandez Hernandez (portavoz)
4. Andrea Calzada Serrano (secretaria)

FUENTES DE INFORMACIÓN:

1. Real Academia Española (RAE)
2. Yahoo Respuestas
3. Wikipedia

ESTUDIO DE LA MITOSIS EN CÉLULAS DE LA RAÍZ DE LA CEBOLLA

7/06/2016

Para realizar esta práctica utilizamos los siguentes materiales:

• Microscopio
• Portas
• Cubres
• Pinzas de madera
• Pinzas
• Mechero de alcohol
• Tijeras
• Papel secante
• Vaso de precipitados
• Vidrio de reloj
• Orceína A
• Orceína B
• Cebolla
• Agua

Técnica:

1. Llenamos un vaso de precipitados con agua y colocamos la cebolla de manera que la parte inferior quede inmersa en el agua. 
2. Al cabo de 3-4 días aparecerán numerosas raicillas en crecimiento de unos 3 o 4 cm de longitud.
3. Cortamos con las tijeras dos ápices de las raíces y los depositamos en el vidrio de reloj 
4. Añadimos 2-3 gotas de Oceína A
5. Calentamos  el vidrio de reloj a la llama del mechero durante unos 8 minutos, evitando la ebullición, hasta la emisión de vapores tenues.
6. Con las pinzas tomamos uno de los ápices  y lo colocamos sobre un portaobjetos
7. Añadimos una gota de Orceína B y dejamos actuar durante 1-2 minutos.
8. Colocamos el cubre con mucho cuidado sobre la raíz.
9. Observa al microscopio.

 

 

Fotos:

Materiales

Orceína A y B

Colocamos la cebolla en el vaso de precipitados

Colocamos 2 ápices en el vidrio reloj

Añadimos la Orceína A

Calentamos

Colocamos un ápice en el porta

Observamos al microscopio

10/06/2016

Realizamos de nuevo el experimeto, puesto que el día anterior no nos salió.

Resultados:

Resultado del grupo Romalsa

Prácticas Ampliación de Biología  -10-

 GRUPO: KUANSA

COMPONENTES:

1. Ana Sánchez Sierra (moderadora)
2. Sandra Vaquero Portocarrero (controladora)
3. Andrea Hernandez Hernandez (portavoz)
4. Andrea Calzada Serrano (secretaria)

FUENTES DE INFORMACIÓN:

1. Real Academia Española (RAE)
2. Yahoo Respuestas
3. Wikipedia

¿QUÉ FACTORES AFECTAN A LA GERMINACIÓN DE LAS SEMILLAS?

3/06/2016

Comenzamos a preparar el experimento, lo primero que hicimos fue plantear en que iba a consistir nuestra práctica, y decidimos lo siguiente:

· 3 vasos de yogurt solo con abono ( será el control)
· 3 vasos de yogurt con 5ml de agua
· 3 vasos de yogurt con 10ml de agua

· 3 vasos de yogurt con 15ml de agua

· 3 vasos de yogurt con 20ml de agua

Una vez organizada nuestra practica, preparamos los materiales:

• Abono
• 15 vasos de yogurt
• Cuchara de plástico
• Báscula
• Rotulador
• Agua
• Vaso de precipitados
• Pipeta
• Bandeja de plástico
• Semillas de tomates cherry

Técnica:

1. Seleccionamos 15 vasos de yogurt, y los marcamos
2. Añadimos 43g de abono en cada vaso
3. Los colocamos en la bandeja de plástico
4. Añadimos una semilla en cada vaso
5. Regamos nuestras plantas todos los días (excepto fines de semana)con la cantidad de agua que acordamos al principio

Marcamos los vasos

Seleccionamos los 15

Añadimos el abono

Introducimos las semillas

Regando

9/06/2016

Observamos que nuestras plantas habían germinado, eso sí, no todas.
El resultado de las plantas que habían germinado fue el siguiente:

• Prueba: 2 de 3
• 5ml: 2 de 3
  
• 10ml: 1 de 3
• 15ml: 1 de 3
• 20ml: 0 de 3

Prácticas Ampliación de Biología  -9-

 GRUPO: KUANSA

COMPONENTES:

1. Ana Sánchez Sierra (moderadora)
2. Sandra Vaquero Portocarrero (controladora)
3. Andrea Hernandez Hernandez (portavoz)
4. Andrea Calzada Serrano (secretaria)

FUENTES DE INFORMACIÓN:

1. Real Academia Española (RAE)
2. Yahoo Respuestas
3. Wikipedia

¿QUÉ FACTORES AFECTAN A LA GERMINACIÓN DE LAS SEMILLAS?

31/05/2016

Cada uno de los grupos estudiará un factor diferente:

Kuansa: La humedad
Fermenta2: Los nutrientes
Romalsa: La luz

Una vez que elegimos el factor que íbamos a estudiar, hicimos nuestra hipótesis:
"Si no hay humedad, la semilla no germinará"

A continuación, nos preguntamos que sabíamos, y que no sobre la germinación de las semillas.

¿Qué sabemos?

Que sin humedad, la planta no va a germinar

¿Que no sabemos?

Cada cuanto tiempo hay que regar la semilla
Cuanto tiempo tarda en germinar
Como germina
Que materiales necesitamos

Prácticas Biología de 2º Bachillerato -8-

 GRUPO: KUANSA

COMPONENTES:

1. Ana Sánchez Sierra (moderadora)
2. Sandra Vaquero Portocarrero (controladora)
3. Andrea Hernandez Hernandez (portavoz)
4. Andrea Calzada Serrano (secretaria)

FUENTES DE INFORMACIÓN:

1. Real Academia Española (RAE)
2. Yahoo Respuestas
3. Wikipedia

 EXTRACCIÓN "CASERA" DE ADN (II)

27/05/2016

Realizamos la ectracción de ADN en un producto animal, para ello necesitamos los siguientes materiales:

• Hígado de pato
• Agua destilada
• Arena
• Mortero
• Tubos de ensayo
• Gradilla
• Pipetas 
• Pipeteadores 
• Papel secante
• Rotulador
• Alcohol etílico (frío) 
• Varilla
• Vaso de precipitados

Realización:

1.  Elegimos la muestra, en este caso será el hígado de pato, y la cortamos en cuadraditos
2. Trituramos el hígado, con ayuda de agua destilada y arena
3. Cogemos un tubo de ensayo, y lo marcamos
4. En el añadimos 5ml del triturado celular, y 5ml de la solución tampón
5. Agitamos el caldo molecular que hemos obtenido
6. Retiramos 5ml del caldo molecular a otro tubo de ensayo
7. Añadimos con una pipeta 10ml de alcohol en el tubo de ensayo con el caldo molecular. Se debe dejar escurrir el alcohol lentamente por la cara interna del recipiente.
8. Observamos que el alcohon queda flotando sobre el tampón
9. Por último introducimos la punta de una varilla hasta justo debajo de la separación entre el alcohol y el tampòn.
10. Removemos la varilla hacia delanta y hacia atrás.

Resultados:

Observaremos como se van enrollando los fragmentos de ADN, une vez que sacamos la varilla. Esta vez no nos salió del todo bien, puesto que no utilizamos el alcohol adecuado.

Fotos:

Materiales

Triturando el hígado de pato

Resultado

Prácticas Biología de 2º Bachillerato -7-

 GRUPO: KUANSA

COMPONENTES:

1. Ana Sánchez Sierra (moderadora)
2. Sandra Vaquero Portocarrero (controladora)
3. Andrea Hernandez Hernandez (portavoz)
4. Andrea Calzada Serrano (secretaria)

FUENTES DE INFORMACIÓN:

1. Real Academia Española (RAE)
2. Yahoo Respuestas
3. Wikipedia

 EXTRACCIÓN "CASERA" DE ADN

24/05/2016

Comenzamos con la ectracción de ADN en vegatal, para ello necesitamos los siguientes materiales:

• Cebolla
• Agua destilada
• Arena
• Mortero
• Tubos de ensayo
• Gradilla
• Pipetas 
• Pipeteadores 
• Papel secante
• Rotulador
• Centrífuga
• Alcohol etílico (frío) 

 

 Realización:

En primer lugar  preparamos la solución tampón con los siguientes ingredientes:

• 120ml de agua destilada
• 1,5g de sal de mesa
• 5g de bicarbonato sódico
• 5ml de jabón

1.  Elegimos la muestra, en nuestro caso será la cebolla, y la cortamos en cuadraditos
2. Trituramos la cebolla, con ayuda de agua destilada y arena
3. Cogemos un tubo de ensayo
4. En el añadimos 5ml del triturado celular, y 5ml de la solución tampón
5. Agitamos y centrifugamos a baja velocidad
6. Retiramos 5ml del caldo molecular a otro tubo de ensayo
7. Añadimos con una pipeta 10ml de alcohol en el tubo de ensayo con el caldo molecular. Se debe dejar escurrir el alcohol lentamente por la cara interna del recipiente.
8. Observamos que el alcohon queda flotando sobre el tampón
9. Por último introducimos la punta de una varilla hasta justo debajo de la separación entre el alcohol y el tampòn.
10. Removemos la varilla hacia delanta y hacia atrás.

Resultados:

Observaremos como se van enrollando los fragmentos de ADN, uns vez que sacamos la varilla

Fotos:

Elegimos la muestra vegetal

Trituramos la cebolla

Colamos el triturado celular

Añadimos la s. tampón

Agitamos

Centrifugamos

Resultado

Prácticas Biología de 2º Bachillerato -6-

 GRUPO: KUANSA

COMPONENTES:

1. Ana Sánchez Sierra (moderadora)
2. Sandra Vaquero Portocarrero (controladora)
3. Andrea Hernandez Hernandez (portavoz)
4. Andrea Calzada Serrano (secretaria)

FUENTES DE INFORMACIÓN:

1. Real Academia Española (RAE)
2. Yahoo Respuestas
3. Wikipedia

3. RECONOCIMIENTO DE LÍPIDOS

20/05/2016
Comenzamos a estudiar las propiedades físicas de las grasas.

3.1. SAPONIFICACIÓN

Materiales:

• 1 tubo de ensayo
• gradilla
• pipetas
• pipetedores
• rotulador
• papel secante
• vasos de precipitados
• aceite de oliva
• solución de NaOH al 20%
• agua
• mechero

 Técnica:

1. Marcamos el tubo de ensayo
2. A este le añadimos 2ml de aceite de oliva, y 2ml de NaOH
3. Agitamos bien
4. Lo colocamos durante 20-30 minutos al baño maria
5. Dejamos reposar hasta la próxima clase
6. Observamos y anotamos resultados

Conclusiones:
Tras dejarlo reposar unos días, compromabos que en el tubo se han formado dos capas


Fotos:

antes de calentar

calentando al baño maría

materiales

 3.2 TINCIÓN

Materiales:

• 2 tubos de ensayo
• gradilla
• pipetas
• pipetedores
• rotulador
• papel secante
• aceite de oliva
• tinta china roja
• sudán III

Técnica:

1. Añadir 2 ml de aceite en cada tubo de ensayo
2. En uno de los tubos echamos 4-5 gotas de tinta roja
3. En el otro 4-5 gotas de Sudán III
4. Agitar los tubos
5. Dejar reposar
6. Observar y anotar cambios

Conclusión:

El Sudán III tiñe todo el aceite, en cambio la tinta roja se irá al fondo del tubo de ensayo y el aceite no quedará teñido

 Fotos:

 

Sudán III---Tinta china

3.3 SOLUBILIDAD

Materiales:

• 2 tubos de ensayo
• gradilla
• pipetas
• pipetedores
• rotulador
• papel secante
• agua
• aceite de oliva
• acetona 

Técnica:

1. Cogemos dos tubos de ensayo
2. En uno añadimos 2ml de aceite y 2ml de agua
3. En el otro 2ml de aceite y 2ml de acetona
4. Agitamos fuertemente
5. Dejamos reposar
6. Observamos los cambios

Conclusion:
Al agitarlo, en los dos tubos podemos observar como el aceite se mezcla, en cambio cuando lo dejamos en reposo, en el tubo con agua, el aceite se deposita arriba


Fotos:

 

Prácticas Biología de 2º Bachillerato -5-

 GRUPO: KUANSA

COMPONENTES:

1. Ana Sánchez Sierra (moderadora)
2. Sandra Vaquero Portocarrero (controladora)
3. Andrea Hernandez Hernandez (portavoz)
4. Andrea Calzada Serrano (secretaria)

FUENTES DE INFORMACIÓN:

1. Real Academia Española (RAE)
2. Yahoo Respuestas
3. Wikipedia

2. RECONOCIMIENTO DE PRÓTIDOS

17/05/2016

En primer lugar comenzamos con la coagulación de proteínas, para ello realizamos tres experimentos distintos. 

Los materiales que utilizamos fueron los siguientes:

• 3 tubos de ensayo
• gradilla
• pinzas
• papel secante
• rotulador
• mechero
• pipetas 
• pipeteadores
• leche
• HCl concentrado
• alcohol etílico

materiales

materiales

Metodología:

1.  Con la ayuda de una pipeta, añadimos 3ml de leche en cada uno de los tubos de ensayo
2. Uno de los tubos con leche lo calentamos
3. A otro le añadimos 3ml de HCl concentrado
4. En el último añadimos otros 3ml de alcohol etílico
5. Mezclamos 
6. Dejamos reposar nuestras mezclas hasta el viernes
7. Observamos y anotamos los cambios

 Conclusiones:
 La leche caliente se ha cortado
En el tubo que había leche y alcohol, el alcohol se ha depositado en el medio

Resultados:

leche

leche caliente, leche con alcohol y con HCl

A continuación realizamos la segunda parte de la práctica, denominada reacciones coloreadas específicas, tambien conocidas conocidas como reacciones biuret.

Materiales:

• 4 tubos de ensayo
• gradilla
• pipetas
• pipeteadores
• rotulador
• papel secante
• albúmina
• leche
• agua
• solución de sacarosa
• NaOH
• SO4Cu

 

materiales

Metodología:

1ºexperimento

1. Colocamos 3ml de la solución de albúmina añ 2% en uno de los tubos de ensayo
2. Añadimos 4-5 gotas de SO4Cu al 1%
3. Añadimos 3ml de NaOH
4.  Agitamos
5. Observamos

2º experimento

1. Colocamos 3ml de leche en uno de los tubos de ensayo
2. Añadimos 4-5 gotas de SO4Cu al 1%
3. Añadimos 3ml de NaOH
4.  Agitamos
5. Observamos

3º experimento

1. Colocamos 3ml de la solución de sacarosa en uno de los tubos de ensayo
2. Añadimos 4-5 gotas de SO4Cu al 1%
3. Añadimos 3ml de NaOH
4.  Agitamos
5. Observamos

Prueba

1. Colocamos 3ml de agua en uno de los tubos de ensayo
2. Añadimos 4-5 gotas de SO4Cu al 1%
3. Añadimos 3ml de NaOH
4.  Agitamos
5. Observamos

Conclusiones:

Albúmina-color violeta- positivo

H2O- color azul- negativo

Leche- color violeta- positivo

Sacarosa- color azul- negativo

Resultados:

Para terminar con el reconocimiento de prótidos, resolvimos las siguientes preguntas:

1. ¿Cómo se manifiesta la desnaturalización de la clara de huevo? Se frie
2. ¿Cual de los tres agentes utilizados tiene mayor poder de desnaturalización?
3. ¿Cómo podriamos saber que una  sustancia desconocida es una proteína? Aplicando la reación Biuret
4. ¿Qué colorización da la reación de Biuret? Violeta
5. ¿Una proteína coagulada podria dar la reación de Biuret?
6. Si se realiza la reación de Biuret  sobre un aminoácido como la Glicina ¿es positiva o negativa? ¿Por qué?  Negativa, porque la reación Biuret es solo para péotidos

Prácticas Biología de 2º Bachillerato -4-

 GRUPO: KUANSA

COMPONENTES:

1. Ana Sánchez Sierra (moderadora)
2. Sandra Vaquero Portocarrero (controladora)
3. Andrea Hernandez Hernandez (portavoz)
4. Andrea Calzada Serrano (secretaria)

FUENTES DE INFORMACIÓN:

1. Real Academia Española (RAE)
2. Yahoo Respuestas
3. Wikipedia

2. RECONOCIMIENTO DE PRÓTIDOS

13/05/2016
En primer lugar, nuestros compañeros explicaron su práctica, y resolvimos las dudas.
Acto seguido el profesor nos propuso construir dos aminoácidos, para practicar un enlace peptílico, a continuación los uniremos para formar un dipéptido, luego haremos otro aminoácido y lo uniremos al dipéptido que teniamos para conseguir un tripéptido.
Por último uniremos los tripéptidos de los tres grupos y formaremos una proteína.

Materiales:

8 hidrógenos--color blanco
4 carbonos--color negro
2 nitrógenos--color azul
4 oxígenos--color rojo
16 enlaces--color gris
4 dobles enlaces--color verde
1 radical--color amarillo

Resultados:

Aminoácido 1

Aminoácido 2

Aminoácido 3

 

dipéptido

tripéptido

proteína

Prácticas Biología de 2º Bachillerato -3-

 GRUPO: KUANSA

COMPONENTES:

1. Ana Sánchez Sierra (moderadora)
2. Sandra Vaquero Portocarrero (controladora)
3. Andrea Hernandez Hernandez (portavoz)
4. Andrea Calzada Serrano (secretaria)

FUENTES DE INFORMACIÓN:

1. Real Academia Española (RAE)
2. Yahoo Respuestas
3. Wikipedia

1. RECONOCIMIENTO DE GLÚCIDOS

06/05/2016

Por último, intentamos romper de una manera más brusca el almidón, para ello necesitamos los siguientes materiales:

• tubos de ensayo
• gradilla
• mechero
• papel secante                                            
• pinzas
• rotulador
• pipetas
• pipeteadores
• solución de almidón
• Hcl

Metodología:

1. Cogemos un tubo de ensayo
2.  Le añadimos 3ml de solución de almidós y 2ml de Hcl
3. Lo calentamos
4. Una vez caliente le añadimos 3 gotas de lugol
5. Lo volvemos a calentar por última vez
6. Observamos los cambios

Conclusione:

Añadiendo 2ml de Hcl, tampoco se rompe el almidón

Resultado:

Prácticas Biología de 2º Bachillerato -2-

 GRUPO: KUANSA

COMPONENTES:

1. Ana Sánchez Sierra (moderadora)
2. Sandra Vaquero Portocarrero (controladora)
3. Andrea Hernandez Hernandez (portavoz)
4. Andrea Calzada Serrano (secretaria)

FUENTES DE INFORMACIÓN:

1. Real Academia Española (RAE)
2. Yahoo Respuestas
3. Wikipedia

1. RECONOCIMIENTO DE GLÚCIDOS

03/05/2016

Comenzamos con la investigación de polisacáridos en almidón.

Lo primero que hicimos fue preparar dos experimentos para detectar el almidón en diferentes soluciones.

Los materiales que utilizamos para estos dos experimentos fueron:

• tubos de ensayo
• gradilla
• mechero
• papel secante
• pinzas
• rotulador
• pipetas
• pipeteadores
• solución de almidón
• solución de lugol
• betadine

materiales

materiales

La hipótesis  de la pártica fue: "Si el almidón está formado por glucosa, entoces dará positiva la reación de Fehling"

1º experimento

Metodología:

1. Cogemos uno de los tubos de ensayo
2. Lo marcamos con el rotulador
3. Le añadimos 3ml de la solución de almidón
4. A continuación añadimos 3 gotas de la solución de lugol
5. Movemos el tubo de ensayo
6. Lo calentamos
7. Por último observamos que el color que obtenemos fue transparente cuando estaba caliente, pero al enfriarlo se quedaba azul

2º experimento

Metodología:

1. Cogemos uno de los tubos de ensayo
2. Lo marcamos con el rotulador
3. Le añadimos 3ml de la solución de almidón
4. A continuación añadimos 3 gotas de betadine
5. Movemos el tubo de ensayo
6. Lo calentamos
7. Por último observamos que al calentarlo obtuvimos un color transparente, pero cuando lo dejamos enfriar se quedo en el azul

CONCLUSIÓN

En los dos experimentos es positivo puesto que los dos contienen yodo.

RESULTADOS 

Lo segundo que hicimos en esta clase fue preparar tres nuevos experimentos, con el fin de romper el almidón.

Para ello necesitamos los siguientes materiales:

• tubos de ensayo
• gradilla
• mechero
• papel secante
• pinzas
• rotulador
• pipetas
• pipeteadores
• solución de almidón
• agua
• pan
• Fehling A y B
• ácido sódico
• ácido clorhídrico

1ºexperimento

Metodología:

1. Cogemos un trozo de pan
2. Lo masticamos hasta que quede prácticamente disuelto
3. Nos enjuagamos la boca con agua
4. Echamos la solución obtenida en un vaso de precipitados
5. Cogemos uno de los tubos de ensayo
6. Con ayuda de una pipeta, añadimos 3ml de la solución obtenida (agua+pan)
7. A continuación añadimos 1ml de Fehling A y 1ml de Fehling B
8. Lo calentamos
9. Por último observamos que hemos obtenido un color rojo

2ºexperimento

Metodología:

1. Cogemos otro de los tubos de ensayo
2. Añadimos 3ml de la solución de almidón y 1ml de ácido clorhídrico(Hcl)
3. Lo calentamos
4. A continuación añadimos 1ml de Fehling A y 1ml de Fehling B
5. Por último observamos los resultados

3ºexperimento

Metodología:

1. Cogemos un tubo de ensayo
2. Añadimos 3ml de la solución de almidón y 1ml de ácido sódico (NaOH)
3. Lo calentamos 1 minuto aprox.
4. Añadimos 1ml de Fehling A y 1ml de Fehlinhg B
5. Observamos los resultados

 CONCLUSIONES

Con las enzimas- el almidón se rompe
Con ácido clorhídrico- el almidón empieza a degradarse
Con ácido sódico- el almidón no se rompe

RESULTADOS

NaOH y Hcl